IHC常見問題原因分析
問題 | 可能原因 | 驗證或解決辦法 |
無染色 | 一抗和二抗不匹配 | 使用針對一抗的二抗(如一抗來自兔,二抗為抗兔抗體) |
沒有足夠的一抗與目標蛋白結合 | 使用低稀釋度抗體。延長4℃孵育時間(如過夜)。 | |
抗體的天然結構(3D形態(tài))受損不適用于IHC | 用天然(非變性的)WB法檢測抗體,確??贵w沒被損壞。 | |
由于不當儲存、稀釋或反復凍融造成一抗/二抗試劑盒失效 | 做陽性對照確認一抗/二抗試劑盒的有效性。 | |
靶組織中沒有目標蛋白 | 參照抗體供應商的建議做陽性對照。 | |
組織中沒有足夠的目標蛋白 | 應用信號放大操作。 | |
沒有避光保存二抗 | 避免將二抗處于光照下 | |
脫蠟不徹底 | 延長脫蠟時間,更換二甲苯。 | |
固定步驟(使用福爾馬林和多聚甲醛固定劑)修飾了抗體識別表位 | 抗原修復法暴露出抗原表位,縮短固定時間。 | |
蛋白位于細胞核內(核蛋白),抗體不能穿透核膜 | 在封閉液和抗體稀釋液中加入通透劑。 | |
PBS緩沖液被細菌污染后破壞了靶蛋白的磷酸根 | 在抗體PBS儲存液中加入0.01%疊氮化合物,或使用新鮮無菌的PBS。 | |
高背景 | 沒有封閉非特異性結合或封閉不充分 | 延長封閉時間,并考慮改換封閉劑。建議用10%正常血清封閉切片1小時或1-5% BSA封閉培養(yǎng)細胞30分鐘。 |
一抗?jié)舛冗^高 | 滴定法尋找到最佳抗體濃度,或在濃度較低抗體中延長孵育時間(最好是緩慢而準確地結合)。 | |
孵育溫度過高 | 4°C孵育切片或細胞。 | |
二抗發(fā)生了非特異性結合(被損壞) | 不加一抗,做二抗對照。 | |
組織沖洗不徹底,有固定劑殘留 | 所有步驟都要用PBS充分洗滌。 | |
存在內源性過氧化物酶活性 | 用酶抑制劑如抑制堿性磷酸酶的鹽酸左旋咪唑(2mM),或抑制過氧化物酶的H2O2(0.3% v/v)。 | |
固定過度(固定劑用福爾馬林和多聚甲醛)導致抗體識別抗原位點被修飾 | 改變抗原修復方法,縮短與抗原修復液的孵育時間。 | |
信號過度放大(信號放大技術) | 縮短信號放大孵育時間,稀釋信號擴大試劑盒。 | |
染料與PBS在細胞/組織中相互作用(酶檢測法) | 用Tris緩沖液沖洗切片后,再與底物孵育。孵育后,Tris緩沖液再次沖洗細胞/切片。 | |
通透作用破壞膜并除去了膜蛋白 | 去除緩沖液中的通透劑 | |
底物過量(酶檢測法) | 縮短底物孵育時間 | |
非特異性染色 | 一抗/二抗?jié)舛冗^高 | 降低抗體濃度和或縮短孵育周期。對比不表達目標蛋白細胞的信號強度。 |
存在內源性過氧化物酶活性 | 用酶抑制劑如抑制堿性磷酸酶的鹽酸左旋咪唑(2mM),或抑制過氧化物酶的H2O2(0.3% v/v)。 | |
一抗與被染組織同源(如用鼠一抗測鼠組織),加二抗后,二抗會與同源的所有組織結合 | 應用與組織非同源的一抗 | |
切片/細胞變干 | 保持切片/細胞濕度,切勿變干。 |